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    人α2干扰素与人血清白蛋白的融合蛋白的制备方法及产品<%=id%>

    . 214036江苏省无锡市惠河路170号
    发 明 (设计)人:. 金 坚;雷楗勇;杨健良;张莲芬;窦文芳;徐 钰;李 洁. 国. 际 申 请:..
    国. 际. 公. 布:.. 进入国家日期:..
    专利 代理 机构:.. 无锡市大为专利商标事务所. 代.. 理.. 人:. 时旭丹
    .
    . 摘要 .
    .人α2干扰素与人血清白蛋白的融合蛋白的制备方法及产品,属于长效融合蛋白药物技术领域。本发明利用重叠PCR技术,连接IFNα2 cDNA和HSA cDNA,中间不加入任何连接肽,得到的HSA-IFNα2 cDNA融合基因被整合到宿主的染色体中进行表达;本发明的融合蛋白包括与人α2干扰素至少85%序列同源的第一区和与人血清白蛋白至少85%序列同源的第二区,两区直接连接,中间不加入任何连接肽,该融合蛋白可以在不改变融合蛋白特性的前提下,进行个别氨基酸残基的取代、缺失或加入;宿主表达系统可以是细菌、酵母、昆虫细胞、动物细胞、植物细胞等。本发明的融合蛋白在保持了人α2干扰素的生理特性的基础上延长其在体内的半衰期,在药学领域有良好的应用前景。
    . 主权项  .
    .1、人α2干扰素与人血清白蛋白的融合蛋白的制备方法,其特征是IFNα2 cDNA通过RT-PCR从经新城鸡瘟病毒诱导的人淋巴细胞RNA中直接扩增得到;HSA cDNA通过PCR从人胎肝cDNA文库中扩增获得;获得的IFNα2cDNA和HSAcDNA 分别插入到克隆载体中,测序;利用重叠PCR技术,连接IFNα2cDNA和HSAcDNA,中间不加入任何连接肽,得到的HSA-IFNα2cDNA融合基因插入到克隆载体中保存;利用毕赤酵母分泌型表达载体将HSA-IFNα2cDNA融合基因整合到宿主的染色体中进行表达; (1)IFNα2cDNA的克隆: 取正常人外周血加淋巴细胞分离液,分离出人血白细胞,用含有5%胎牛血清的DMEM培养基稀释至细胞浓度为5×107个/ml,加入新城鸡瘟病毒到100血凝单位/ml,37℃,5%CO2,培养1小时,使病毒吸附在细胞上,1000×g离心弃上清,加入新鲜的有5%胎牛血清的DMEM培养基,37℃,5%CO2,培养18小时;用RNA提取试剂盒分离总RNA,用一步法RT-PCR试剂盒反转录为cDNA并从中扩增出IFNα2,所用的引物如下: Pa2b1:5’-AGAGTCGACATGTGTGATCTGCCTCAA-3’ Pa2b2:5’-GCCAAGCTTTCATTCCTTACTTCTTAAACT-3’ 一步法RT-PCR反应体系配制如下: 10×onestepRNAPCRBuffer5μl 25mMMgCl210μl 10mMdNTP5μl RNaseinhibitor(40U/μl)1μl AMV-optimizedTaq1μl AMVRTaseXL(5U/μl)1μl 10μMPa2b12μl 10μMPa2b22μl 提取的总RNA1μl RNaseFreeH2O22μl 总体积50μl 反应条件为:50℃30分钟,94℃变性2分钟,94℃变性1分钟,55℃退火 1分钟,72℃延伸90秒,循环30次; 通琼脂糖凝胶电泳分析反应产物,在加样泳道出现目标条带;用PCR片段胶回收试剂盒纯化出0.5kb的目标片段;纯化好的目标片段和载体pBlueScript IIKS(+),经SalI和HindIII双酶切,琼脂糖凝胶电泳纯化,用PCR片段胶回收试剂盒回收;用T4连接酶连接两双酶切后纯化好的片段;连接产物转化大肠杆菌DH5α感受态细胞,转化物涂布于含有X-gal、IPTG和100μg/ml氨苄青霉素的LB琼脂平板,37℃培养过夜;挑取白色菌落,接种于20ml含100μg/ml 氨苄青霉素的LB培养基中37℃培养过夜,提取质粒;通过PCR,及SalI和HindIII 双酶切,琼脂糖凝胶电泳鉴定阳性克隆,并对重组质粒SalI和HindIII酶切位点间区域进行DNA测序;阳性重组子保存在含有20%甘油的LB中,冻于-80℃;重组质粒命名为pBlue-IFNα2,阳性重组子命名为DH5α/pBlue-IFNα2; (2)HSAcDNA的克隆: 利用PCR从人胎肝cDNA文库中扩增出HSAcDNA,所用的引物为: HSA1:5’-AGAGTCGACGATGCACACAAGAGTGAGGTTGCTC-3’ HSA2:5’-GCCAAGCTTTTATAAGCCTAAGGCAGCTTGACTT-3’ PCR方法如下:50μl的反应体系中加入:10μmol/L的HSA1和HSA2的引物各3μl,2mmol/L的dNTP5μl,10×pfuBuffer1μl,5U/μl的pfuDNA 聚合酶0.5μl,人胎肝cDNA文库1μg,加双蒸水补齐50μl;PCR条件为: 95℃变性5分钟,94℃变性1分钟,60℃退火1分钟,72℃延伸90秒,循环30 次; 通琼脂糖凝胶电泳分析反应产物,在加样泳道出现目标条带,用PCR片段胶回收试剂盒纯化出1.8kb的目标条带,纯化好的目标片段和载体pBlueScript IIKS(+)分别经SalI和HindIII双酶切;琼脂糖凝胶电泳纯化,用PCR片段胶回收试剂盒回收,用T4连接酶连接两双酶切后纯化好的片段;连接产物转化大肠杆菌DH5α感受态细胞,转化物涂布于含有X-gal、IPTG和100μg/ml 氨苄青霉素的LB琼脂平板,37℃培养过夜;挑取白色菌落,接种于20ml含 100μg/ml氨苄青霉素的LB培养基中37℃培养过夜,提取质粒;通过PCR,及 SalI和HindIII双酶切,琼脂糖凝胶电泳鉴定阳性克隆,并对重组质粒SalI和 HindIII酶切位点间区域进行DNA测序;阳性重组子保存在含有20%甘油的LB 中,冻于-80℃;重组质粒命名为pBlue-HSA,阳性重组子命名为DH5α/pBlue -HSA; (3)HSAcDNA和IFNα2cDNA融合基因的克隆: HSAcDNA的PCR扩增,所用引物如下: Pf1:5’-CCCTCCGAATTCAAAAGAGATGCACACAAGAGTGAGGTTGCT-3’ Pf2:5’-TGGGTTTGAGGCAGATCACATAAGCCTAAGGCAGCTTGAC-3’ PCR方法如下:50μl的反应体系中加入:10μmol/L的Pf1和Pf2的引物各2.5μl,2mmol/L的dNTP5μl,10×pfuBuffer5μl,5U/μl的pfuDNA 聚合酶0.5μl,pBlue-HSA1ng,加双蒸水补齐50μl;PCR条件为:95℃变性 5分钟,60℃退火1分钟,72℃延伸4分钟,94℃变性1分钟,循环30次; IFNα2cDNA的PCR扩增,所用引物如下: Pf3:5’-GTCAAGCTGCCTTAGGCTTATGTGATCTGCCTCAAACCCA-3’ Pf4:5’-CATAAGGCGGCCGCTCATTCCTTACTTCTTAAACTTTC-3’ PCR方法如下:50μl的反应体系中加入:10μmol/L的Pf3和Pf4的引物各2.5μl,2mmol/L的dNTP5μl,10×pfuBuffer5μl,5U/μl的pfuDNA 聚合酶0.5μl,pBlue-IFNα21ng,加双蒸水补齐50μl;PCR条件为:95℃ 变性5分钟,55℃退火1分钟,72℃延伸90秒,94℃变性1分钟,循环30次; 利用重叠PCR融合HSA和IFNα2cDNA: 将IFNα2的PCR扩增产物和HSA的PCR扩增产物分别稀释40倍,再以1∶1 比例混合后作为模板,于50μl的反应体系中加入:2mmol/L的dNTP5μl, 10×pfuBuffer5μl,5U/μl的pfuDNA聚合酶0.5μl,混合好的模板1μl,加双蒸水补齐45μl;PCR条件为:95℃变性5分钟,65℃退火1分钟,72℃延伸4分钟,94℃变性1分钟,循环10次后,向反应体系中加入10μmol/L的Pf1 和Pf4的引物各2.5μl,继续做30次循环; 通琼脂糖凝胶电泳分析反应产物,在加样泳道出现目标条带;用PCR片段胶回收试剂盒纯化出2.2kb的目标片段;纯化好的目标片段HSA-IFNα2和载体 pBlueScriptIIKS(+),经EcoRI和NotI双酶切,琼脂糖凝胶电泳纯化,用 PCR片段胶回收试剂盒回收;用T4连接酶连接两双酶切后纯化好的片段;连接产物转化大肠杆菌XL-1blue感受态细胞,转化物涂布于含有X-gal、IPTG和 100μg/ml氨苄青霉素的LB琼脂平板,37℃培养过夜;挑取白色菌落,接种于 20ml含100μg/ml氨苄青霉素的LB培养基中37℃培养过夜,提取质粒;通过 PCR,及EcoRI和NotIII双酶切,琼脂糖凝胶电泳鉴定阳性克隆,并对重组质粒EcoRI和NotIII酶切位点间区域进行DNA测序;阳性重组子保存在含有20 %甘油的LB中,冻于-80℃;重组质粒命名为pBlue-HSA-IFNα2,阳性重组子命名为XL-1/pBlue-HSA-IFNα2; (4)HSA-IFNα2酵母表达系统构建: 取一支冻存的XL-l/pBlue-HSA-IFNα2,20ml含有100μg/ml氨苄青霉素的LB培养基中37℃培养过夜,提取质粒;质粒pBlue-HSA-IFNα2和酵母表达载体pPIC9K,经EcoRI和NotI双酶切,琼脂糖凝胶电泳纯化,用PCR片段胶回收试剂盒回收;用T4连接酶连接两双酶切后纯化好的片段;连接产物转化大肠杆菌DH5α感受态细胞,转化物涂布于含有100μg/ml氨苄青霉素的LB琼脂平板,37℃培养过夜;挑取若干个菌落,分别接种于20ml100μg/ml氨苄青霉素的LB培养基中37℃培养过夜,提取质粒;通过PCR,及EcoRI和NotI双酶切,琼脂糖凝胶电泳鉴定阳性克隆,并对重组质粒EcoRI和NotI酶切位点间区域进行DNA测序;阳性重组子保存在含有20%甘油的LB中,冻于-80℃;重组质粒命名为pPIC-HSA-IFNα2,阳性重组子命名为DH5α/pPIC-HSA-IFNα2;提取 DH5α/pPIC-HSA-IFNα2中的质粒,经SalI酶切后,电击转化毕赤酵母KM71;提取酵母基因组DNA,通过PCR,琼脂糖凝胶电泳鉴定重组子;阳性重组子命名为KM71/pPIC-HSA-IFNα2; (5)HSA-IFNα2融合蛋白的表达: 将KM71/pPIC-HSA-IFNα2接种至装有100mlBMGY的500ml三角瓶中, 300rpm,29℃培养至A600nm为2~6,离心收集菌体;将收集到的菌体接种至装有 20mlBMMY的100ml三角瓶中,每24小时补加一次甲醇至终浓度0.5%,诱导7天;离心收集上清,过滤除菌,用细胞病变抑制法测定上清中的HSA-IFNα2活性; Western杂交检测产物HSA的免疫源性。.

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